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游离脂肪酸(FFA)含量试剂盒说明书

阅读次数:776    资料下载    发布时间:2021/6/3 15:00:44

 
游离脂肪酸(FFA)含量试剂盒(测血清、动物组织、微生物、细胞)
微量法 100 管/96
正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定
测定意义:
游离脂肪酸,也称为非酯化脂肪酸,在与白蛋白结合的血浆中循环。动物血液中的游离脂肪
(FFA )含量是一项重要的生理生化指标。血清中游离脂肪酸的浓度与脂类代谢、糖代谢、
内分泌功能有关,游离脂肪酸的浓度会因为糖尿病、重症肝障碍、甲状腺功能亢进等疾病而
上升。
测定原理:
用有机溶剂萃取 FFA。含有 FFA 的有机液与三乙醇胺铜反应,在有机相中形成脂肪酸铜 (
) FFA CuCu 离子与显色液反应形成紫红色络合物。反应形成的颜色深浅与 Cu 离子
浓度的关系符合朗伯一比尔定律,因此可利用此反应进行比色。
自备的仪器和用品:
酶标仪、离心机、可调式移液器、96 孔板、蒸馏水。
试剂的组成和配制:
萃取液:液体 120 mL×1 瓶,4℃保存;
试剂一:液体 15 mL×1 瓶,4℃保存;
试剂二:液体 15 mL×1 瓶,4℃保存;
试剂三:粉剂×1 瓶,室温保存;
试剂四:液体 12 mL×1 瓶,4℃保存;
样本前处理:
1.动物组织:按照动物组织质量(g):萃取液 mL)15~10 的比例(建议称取约 0.1g
织,加入 1mL 萃取液),进行冰浴匀浆。震荡提取 15min5000 rpm 4℃离心 5min,取有
机相待测。
2.血清:吸取 50 μL 血清样本,加入 1 mL 萃取液,震荡提取 15 min 后,4℃,5000 rpm
5 min,取有机相待测。
3.微生物、细胞:按照细胞数量(104 个):萃取液体积(mL)为 500~10001 的比例(建
500 万细胞加入 1 mL 萃取液)加入萃取液,冰浴超声波破碎细胞(功率 300w,超声 2
秒,间隔 3 秒,总时间 3min);震荡提取 15 min,然后 5000 rpm 4℃离心 5min,取有机相
待测。
注意:有机相待测液可能存在于上层,也可能存在于下层,注意观察,体积较多的那一层
即为有机相待测液。
测定步骤:
1、 酶标仪预热 30min 以上,调节波长至 550 nm
2、 工作液的配制:临用前根据用量按照试剂一(V):试剂二(V):试剂三(m=1mL):
1mL):0.66g)的比例充分混匀。(注意:现用现配,用多少配多少,在空瓶中配
制,试剂盒中带有 4 个空瓶,先将试剂一与试剂二混合,*后再加入试剂三粉剂)
3、测定管:吸取600μL样本,加入200μL工作液,盖紧后震荡20 min4℃,5000 rpm
5 min,分层后取200μL上层有机相,加入100μL试剂四,摇匀,10 min后测定550 nm
吸光值,记为A测定。
4、空白管:吸取600μL萃取液,加入200μL工作液,盖紧后震荡20 min4℃,5000 rpm5 min,分层后取200μL上层有机相,加入100μL试剂四,摇匀,10 min后测定550 nm
吸光值,记为A空白。
空白管只需测一次。△A=A测定-A空白
注意:1、有机溶剂易挥发,加入96孔板后应尽快检测。
2、测定管中加入的样本即样本前处理中的有机相待测液。
FFA 含量计算:
标准曲线:y = 0.0161x - 0.0141 R2 = 0.9985 x:棕榈酸标准品浓度(nmol/mL
y:吸光值差值△A
1、血清 FFA 含量计算:
FFA 含量(μmol/mL)=(A+0.0141)÷0.0161×V1÷(V3×V1÷V2)÷1000
=1.242×(A+0.0141)
2、动物组织、微生物、细胞中 FFA 含量计算:
1)按样本蛋白浓度计算
FFA 含量(μmol/g 鲜重)=(A+0.0141)÷0.0161×V1÷W×V1÷V2÷1000
=0.062×(A+0.0141)÷W
2)按样本蛋白浓度计算
FFA 含量(μmo/mg prot)= (A+0.0141)÷0.0161×V1÷(V1×Cpr)÷1000
=0.062×(A+0.0141)÷Cpr
V1:加入样本体积,0.6mLV2:萃取液体积,1mLV3:加入血清(浆)体积,0.05 mL
Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mLW:动物组织样品质量,g10001 μmol=1000 nmol
注意事项:
1.
蛋白含量不可直接用萃取液提取的有机相待测液直接测定,可用蒸馏水或缓冲液或生理
盐水选用本公司的 BCA 法蛋白含量测定试剂盒。
2.
检出限为 20 nmol/mL

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